เครื่องทดสอบสารพิษจากเชื้อรา ST-2000A จอสัมผัส ช่วงคลื่น 400-999nm

ST-2000A Mycotoxin Tester มีระบบการทํางานและการคํานวณที่สามารถสัมผัสได้มากมาย

ST-2000A Mycotoxin Analyzer เป็นเครื่องมือการวิเคราะห์ที่จําเป็นสําหรับการวัด aflatoxin และ enzyme-linked immunosorbentโดยเฉพาะอย่างยิ่งการทดสอบการรับประทานสารต่อมะเร็งที่เชื่อมโยงกับเอ็นไซม (ELISA), ประกอบด้วยอุปกรณ์นี้และชุด B1ซึ่งสามารถใช้ในการกําหนดปริมาณของแอฟลาต็อกซิน B1 และไมโคโทกซินอื่น ๆ ในตัวอย่างได้อย่างจํากัดและปริมาณ (ถ้ามีชุดอื่น ๆ), ยาพิษอื่น ๆ สามารถตรวจสอบได้) มันถูกใช้อย่างแพร่หลายในการตรวจสอบ aflatoxin B1 และยาพิษไมโคโตกซินอื่น ๆ ในอาหาร, อาหารสัตว์, น้ํามัน, ผลิตภัณฑ์นม, ยา, เครื่องดื่ม, ไวน์และผลิตภัณฑ์อื่น ๆ.

คุณลักษณะการทํางาน:

1การทํางานของจอ: จอ LCD สี, บอร์ดกระจายเสียงวีดีโอโฟน, การแสดงข้อมูลของบอร์ดทั้งหมด, การทํางานของจอสัมผัส

2. ป้ายสั่นฟังก์ชัน: ระดับ 3 ความเร็วป้ายสั่น, เวลา 0-255 วินาที ปรับ

3สถานที่ทํางาน: โปรแกรมเครื่องหมายเอ็นไซม์มืออาชีพ, ซึ่งสามารถเก็บโปรแกรม 500 กลุ่ม, ผลการตัวอย่าง 100000, และให้ช่องทางการคํานวณที่รวย เช่น การดูดซึม, สมการเส้น,สมการโลการิธม, สมการกําลังสอง, สมการลูกบาท, สมการลอกอริธมิกของปริมาณการซึมซึม-ปริมาณการมุ่งมั่น, ฟังก์ชัน spline, อัตราการยับยั้ง, เป็นต้น

ปริมาตรเทคนิค:

แหล่งแสง: ไฟฮาโลเจนนําเข้า DC12V 22W

ระยะความยาวคลื่น: 400-900nm

เครื่องกรอง: 405, 450, 492, 630nm ตามมาตรฐาน, ความยาวคลื่นอื่น ๆ เป็นตัวเลือก

ระยะอ่าน: 0-4.000Abs

ความละเอียด: 0.001Abs

ความผิดพลาดการแสดง: ≤ ± 0.01Abs

ความมั่นคง: ≤ ± 0.003Abs

ความซ้ํา: ≤ 0.3%

ขนาด: 400mm * 260mm * 200mm

1 หลักการและการใช้

ชุดนี้ใช้วิธีการ ELISA ที่แข่งขันโดยตรงในการตรวจหา aflatoxin B1 (AFB1) ในเมล็ดพันธุ์, อาหารสัตว์และตัวอย่างอื่น ๆ ชุดนี้ประกอบด้วยแผ่นที่ติดป้ายด้วยเอนไซม์ที่เคลือบพร้อมกันด้วยแอนติเจนเชื่อมเครื่องระบุเอ็นไซม์ของขิง, แอนติบอดี้, สแตนดาร์ดและตัวประกอบอื่น ๆ ที่ตรงกันแอฟลาต็อกซิน B1 ในตัวอย่างและแผ่นเอนไซม์ถูกเคลือบด้วยแอนติเจนคอนยูเกตก่อน เพื่อแข่งขันกันต่อ แอนติบอดีต่อ แอฟลาต็อกซิน B1หลังจากการเพิ่มเครื่องหมายเอนไซม์, ใช้สารสับสราต TMB เพื่อพัฒนาสี. ค่าการดูดซึมตัวอย่างถูกเชื่อมโยงลบกับสัดส่วนของแอฟลาต็อกซิน B1 ในตัวอย่าง.ปริมาณส่วนเหลือของแอฟลาต็อกซีน B1 ในตัวอย่างสามารถได้รับโดยการเปรียบเทียบกับเส้นโค้งมาตรฐาน.

2 ตัวชี้วัดทางเทคนิค

2.1 ความรู้สึกของชุด: 0.03ppb (ng/ml)

2.2 ระบบปฏิกิริยา: 25 °C, 30 นาที ~ 15 นาที

2.3 ขั้นต่ําการตรวจจับ:

ข้าวผัด

อาหารสูตรอาหาร

น้ํามันอาหาร แป้ง 0.6ppb

โซสสอยา, ข้าวปังและอาหารอื่น ๆ

เบียร์ 0.3 ppb

ไวน์, เซอสสอยา, เซนติกา

2.4 อัตราการปฏิกิริยาข้าม:

อาฟลาต็อกซีน B1 100%

2.5 อัตราการเก็บตัวตัวอย่าง:

ผักและอาหารอาหารอาหารอาหารอาหาร 85% ± 15%

ถั่วเหลือง 82 ± 15%

น้ํามันอาหาร 85 ± 15%

โซสสอยา, ข้าวปังและอาหารอื่น ๆ 83 ± 15%

เบียร์ 84 ± 15%

ไวน์, เซอสสอยา, เซนติกา...... 87 ± 15%

3 ประกอบของชุด

แผ่นเครื่องหมายเอนไซม์ 96 หลุม

สารแก้วแบบมาตรฐาน (ปกดํา): 1 ml ทุกชิ้น

0ppb00.03ppb00.06ppb0.12ppb0.24ppb0.48ppb

โซลูชั่นมาตรฐานสูง: 100ppb 1ml

ธาตุระบุเอนไซม์ (หมวกสีแดง)

น้ํายาแก้ไขการทํางานของแอนติบอดี (หมวกสีฟ้า) 5.5 ml

สับสราตละลาย A (หมวกขาว) 6 ml

สับสราทเหลว B (ปกดํา) 6 ml

น้ํายาปลาย (หมวกสีเหลือง)

20X น้ํายาซักผสม (ปกสีขาว)

คู่มือการใช้งาน

4 อุปกรณ์และสารปฏิกิริยาที่จําเป็น

4.1 อุปกรณ์: เครื่องทดสอบแอฟลาต็อกซิน เครื่องพิมพ์ เครื่อง homogenizer เครื่องแห้งไนโตรเจน เครื่องหมุนเวียน เครื่องหลอมศูนย์กลาง เครื่องปิเป็ตระดับ

4.2 ไมโครไพเป็ต: ช่องเดียว 20 μl-200 μl, 100 μl-1000 μl, หลายช่อง 300 μl

4.3 ปัจจัยปฏิกิริยา: เมธาโนล, n-เฮกซาน, ทริคลอโรเมธานหรือดิคลอโรเมธาน

5 การรักษาตัวอย่างก่อน

5.1 คําแนะนําก่อนการแปรรูปตัวอย่าง:

อุปกรณ์การทดลองต้องสะอาดและใช้หัวดูดที่ใช้ครั้งเดียว เพื่อหลีกเลี่ยงการติดเชื้อและการแทรกแซงผลการทดลอง

5.2 การเตรียมสารละลาย:

การแก้ไข 1: สารสกัดตัวอย่าง

70% เมธาโนล, หมายถึง V เมธาโนล: V น้ําดีออน = 7:3.

5.3 ขั้นตอนการรักษาตัวอย่างก่อน:

5.3.1 วิธีการแปรรูปข้าวโพด

1) น้ําหนัก 2 กรัมของตัวอย่างที่บดลงในหลอดเซ็นทริฟิวเจอร์ 50 มิลลิลิลิตร, เพิ่ม 5 มิลลิลิลิตรของสารแก้วการสกัดตัวอย่าง, สั่น 5 นาที, 4000 รอบ / นาทีในอุณหภูมิห้อง / 10 นาทีของศูนย์การแยก;

2) นํา 0.5 ml ของ supernatant, เพิ่ม 0.5 ml ของน้ํา deionized, และผสมให้ดี;

3) รับ 50 μL การวิเคราะห์

อัตราการละลายตัวอย่าง: 5 ต่ําสุดของขีดจํากัดการตรวจพบ: 0.15ppb

5.3.2 วิธีการแปรรูปตัวอย่างที่มีการดูดซึมน้ําอย่างมาก เช่น เปลือกข้าวโพดและหมักข้าวโพด

1) น้ําหนัก 2 กรัมของตัวอย่างที่บดลงในหลอดเซ็นทริฟิวเจอร์ 50 มิลลิลิตร, เพิ่ม 20 มิลลิลลิตรของสารแก้วการสกัดตัวอย่าง, สั่น 5 นาที, 4000 รอบ / นาทีในอุณหภูมิห้อง / 10 นาทีของศูนย์การแยก;

2) นํา 0.5 ml ของ supernatant, เพิ่ม 0.5 ml ของน้ํา deionized, และผสมให้ดี; (สําหรับตัวอย่างที่มีสารพิษสูงมาก, มันสามารถปรับน้ําได้ด้วย 35% เมธาโนลและทดสอบ. ตัวอย่างเช่นนํา 0.1 ml ของสารละลายผสมใน 2) และ 0.9 มิลลิลิตรของเมธาโนล 35% เพื่อผสมกัน ความสัมพันธ์การละลายตัวอย่างสุดท้ายคือ 200 และขีดจํากัดการตรวจพบคือ 6ppb)

3) รับ 50 μL การวิเคราะห์

อัตราการละลายตัวอย่าง: 20 ต่ําสุดของขีดจํากัดการตรวจพบ: 0.6ppb

หมายเหตุ: เนื่องจากการกระจายของสารพิษในตัวอย่างไม่เท่าเทียมกัน จึงจําเป็นต้องเก็บตัวอย่างจากหลายจุดและผสมให้หมดก่อนที่จะเก็บ 2 กรัมเพื่อทดสอบ

5.3.3 วิธีการแปรรูปอาหารสูตรอาหาร

1) น้ําหนัก 2 กรัมของตัวอย่างที่บดลงในหลอดเซ็นทริฟิวเจอร์ 50 มิลลิลิลิตร, เพิ่ม 10 มิลลิลิลิตรของสารแก้วการสกัดตัวอย่าง, สั่น 5 นาที, 4000 รอบ / นาทีในอุณหภูมิห้อง / 10 นาทีของศูนย์การแยก;

2) นํา 0.5 ml ของ supernatant, เพิ่ม 0.5 ml ของน้ํา deionized, และผสมให้ดี;

3) รับ 50 μL การวิเคราะห์

อัตราการละลายตัวอย่าง: 10 ต่ําสุดของขีดจํากัดการตรวจพบ: 0.3ppb

5.3.4 วิธีการบําบัดอาหารสัตว์ของน้ํามันกิน, ถั่วและไขมันสูง

1) น้ําหนัก 2 กรัมของตัวอย่างที่บดลงในหลอดเซ็นทริบูจ 50 มิลลิลิต, เพิ่ม 8 มิลลิลิตรของ n-hexane และ 10 มิลลิตรของสารสกัดตัวอย่าง, สั่น 5 นาที, 4000 รอบ / นาทีในอุณหภูมิห้อง / 10 นาทีของศูนย์การแยก;

2) ถอนของเหลวด้านบน, เอา 0.5 ml ของเหลวด้านล่างและเพิ่ม 0.5 ml ของน้ํา deionized, ผสมให้ดี, จากนั้นเอา 0.5 ml ของเหลวผสมและเพิ่ม 0.5 ml ของ 35% เมธาโนล, สั่น 30s;

3) รับ 50 μL การวิเคราะห์

อัตราการละลายตัวอย่าง: 20 ต่ําสุดของขีดจํากัดการตรวจพบ: 0.6ppb

5.3.5 อาหารหรือเครื่องปรุงรส เช่น ซอส, ข้าวโพด, บิสกิต, เครื่องแปรรูป และวิธีการแปรรูปอาหาร เช่น อาหารปลา

1) น้ําหนัก 2 กรัมของตัวอย่างที่บดลงในหลอดเซ็นทริฟิวเจอร์ 50 มิลลิลิลิตร, เพิ่ม 10 มิลลิลิลิตรของสารแก้วการสกัดตัวอย่าง, สั่น 5 นาที, 4000 รอบ / นาทีในอุณหภูมิห้อง / 10 นาทีของศูนย์การแยก;

2) นําสารระบายน้ํา 2 ml, เพิ่ม trichloromethane (หรือ dichloromethane) 4 ml, สั่น 5 นาที, 4000 รอบ / นาทีในอุณหภูมิห้อง / 10 นาทีของศูนย์การแยก;

3) โอนของเหลวชั้นบนไปยังถังอื่น, ปล่อยของเหลวชั้นล่างเป็นการรอคอย, เพิ่ม chloroform อีก 4 ml (หรือ dichloromethane) ไปยังของเหลวชั้นบน, สั่นเต็มที่และผสม 5 นาที,และอุณหภูมิห้อง 4000 รอบ / นาที / ศูนย์แยก 10 นาที;

4) ถอนของเหลวด้านบน, ผสมของเหลวด้านล่างสองครั้งและผสมเต็ม;

5) นําของเหลวส่วนล่างรวม 2 ml และเป่ามันแห้งใต้ 50-60 °C ไนโตรเจน

6) เพิ่ม 0.5 ml ของสารสกัดตัวอย่างเพื่อละลายสารแห้งได้อย่างสมบูรณ์ และจากนั้นเพิ่ม 0.5 ml ของน้ําไม่ย่อยให้ผสม

7) รับ 50 μL การวิเคราะห์

อัตราการละลายตัวอย่าง: 10 ต่ําสุดของขีดจํากัดการตรวจพบ: 0.3ppb

5.3.6 วิธีการแปรรูปเบียร์

1) ผสมเบียร์ให้เต็มที่ (เอา CO2 ออก) คว้าตัวอย่างเบียร์ 2 มิลลิลลิตร เพิ่มน้ํากระบี่ 1 มิลลิลลิตร เพิ่มเมธาโนล 7 มิลลิลลิตร และสั่น 5 นาที

2) เอาละลายตัวอย่างผสม 0.5 ml และเพิ่มน้ําดีออน 0.5 ml เพื่อผสมให้ดี

3) รับ 50 μL การวิเคราะห์

อัตราการละลายตัวอย่าง: 10 ต่ําสุดของขีดจํากัดการตรวจพบ: 0.3ppb

5.3.7 วิธีการบําบัดของไวน์, เซอสสอยา และ เซนติกา

1) คว้าตัวอย่าง 2 ml, เพิ่ม 2 ml น้ําระบาย, เพิ่ม 10 ml ของ trichloromethane (หรือ dichloromethane), สั่น 5 นาที, 4000 รอบ / นาทีที่อุณหภูมิห้อง / 10 นาทีของศูนย์การแยก;

2) นําของเหลวด้านล่าง 1 ml และเป่ามันแห้งใต้ 50-60 °C ไนโตรเจน

3) เพิ่ม 0.5 ml ของสารสกัดตัวอย่างเพื่อละลายสารแห้งได้อย่างสมบูรณ์, จากนั้นเพิ่ม 0.5 ml ของน้ํา deionized, และผสมให้ดี;

5) รับ 50 μL การวิเคราะห์

อัตราการละลายตัวอย่าง: 5 ต่ําสุดของขีดจํากัดการตรวจพบ: 0.15ppb

6 ขั้นตอนของ ELISA

ถอนสารปฏิกิริยาที่ต้องการออกจากสภาพแวดล้อมที่เก็บรักษาเย็น 4 °C และวางมันในอุณหภูมิห้องพักนานกว่า 30 นาทีอาจมีคริสตัลที่จําเป็นต้องนํากลับไปสู่อุณหภูมิห้อง เพื่อละลายได้อย่างสมบูรณ์เมื่อสารล้างถูกเก็บไว้ในที่เย็นผสมสารปฏิกิริยาเหลวแต่ละตัวต้องสั่นก่อนการใช้ ถอนแผ่นและกรอบไมโครโปโรส จํานวนที่ต้องการ วางแผ่นไมโครโปโรสที่ไม่ได้ใช้ไว้ในถุงปิดตัวเอง และเก็บไว้ที่ 2-8 °C

ก่อนการทดลอง, 20 × การละลายสารล้างที่ผสมผสานเป็นสารล้างที่ใช้ได้ 20 ครั้ง.

6.1 การให้หมายเลข: ให้หมายเลขหลุมที่ตรงกันของตัวอย่างและมาตรฐานตามลําดับ ทําหลุมคู่กันสองหลุมสําหรับตัวอย่างและมาตรฐานแต่ละหลุม และบันทึกตําแหน่งของหลุมมาตรฐานและหลุมตัวอย่าง.

6.2 การปฏิกิริยาในการเพิ่มตัวอย่าง: เพิ่ม 50 μl/หลุมของตัวอย่างมาตรฐานหรือตัวอย่างเข้าไปในหลุมที่เหมาะสมของพวกเขา, จากนั้นเพิ่ม 50 μl/หลุมของเครื่องหมาย enzyme, จากนั้นเพิ่ม 50 μl/หลุมของสารแก้ว antibody,ปิดแผ่นด้วยเยื่อแผ่นปก, สั่นให้อ่อนแอ 5 วินาที ผสมและปฏิกิริยาที่ 25 °C เป็นเวลา 30 นาที

6.3 การล้าง: ถอนผิวแผ่นปิดอย่างระมัดระวัง, แห้งของเหลวในรู, ล้างรูทั้งหมดด้วยสารล้างทํางาน 250 μl / hole 5 ครั้ง, โดยระยะเวลา 30 วินาทีและทับมันแห้งด้วยกระดาษซึม (กลองที่ไม่ได้ถอนออกหลังจากทับสามารถเจาะด้วยหัวปืนสะอาด).

6.4 การพัฒนาสี: เพิ่ม 50 μl ของสารละลาย substrate A และ 50 μl ของสารละลาย substrate B ไปยังรูแต่ละรู, สั่นอ่อนๆ 5 วินาทีและผสมให้ดี, และพัฒนาสีในที่มืด 25 °C เป็นเวลา 15 นาที.

6.5 การสิ้นสุด: เพิ่มละลายสิ้นสุด 50 μl ในแต่ละหลุม, สั่นอ่อนและผสมให้ดีเพื่อสิ้นสุดปฏิกิริยา.

6.6 การวัดค่าการดูดซึม: ใช้เครื่องทดสอบแอฟลาต็อกซินในการวัดค่าการดูดซึมของแต่ละรูที่ 450 nm (แนะนําความยาวคลื่นสอง 450/630 nm)การกําหนดจะเสร็จสิ้นภายใน 10 นาทีหลังจากปฏิกิริยาสิ้นสุด

6.7 เครื่องทดสอบแอฟลาต็อกซินอัตโนมัติ ST-2000A จบการกําหนดโดยอัตโนมัติและผลิตผลโดยอัตโนมัติ